血涂片在用光学显微镜观察前需要固定和染色。固定是将细胞蛋白质和多糖等成分迅速交联凝固,以保持细胞原有形态结构不发生变化。染色是使细胞的主要结构,如细胞膜、细胞质、细胞核等染上不同的颜色,以便于镜下观察识别。血涂片染色方法大多源自罗氏染色法,常用的有瑞氏(Wright)染色法、吉姆萨染色法。
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瑞氏染色原理
瑞氏染色法使细胞着色既有化学亲合作用,又有物理吸附作用。各种细胞由于其所含化学成分不同,对染料的亲合力也不一样,因此,染色后各种细胞呈现出各自的染色特点。如血红蛋白、嗜酸性颗粒为碱性蛋白质,与酸性染料伊红结合,染粉红色,称为嗜酸性物质。细胞核蛋白、淋巴细胞、嗜碱性粒细胞胞质为酸性,与碱性染料亚甲蓝或天青结合,染紫蓝色或蓝色,称为嗜碱性物质。中性颗粒呈等电状态与伊红和亚甲蓝均可结合,染淡紫红色,称为嗜中性物质。原始红细胞、早幼红细胞胞质、核仁含较多酸性物质,染成较浓厚的蓝色;中幼红细胞既含酸性物质,又含碱性物质,染成红蓝色或灰红色,完全成熟红细胞,酸性物质彻底消失后,染成粉红色。
试剂配制
瑞氏染料由酸性染料伊红(E)和碱性染料亚甲蓝(M)组成。伊红通常为钠盐,有色部分为阴离子。亚甲蓝(又名美蓝)为四甲基硫革染料,有对醒型和邻醒型两种结构。通常为氯盐,即氯化亚甲蓝,有色部分为阳离子。亚甲蓝容易氧化为一、二、三甲基硫堇等次级染料(即天青)。将适量伊红、亚甲蓝溶解在甲醇中,即为瑞氏染料。甲醇的作用:一是溶解亚甲蓝和伊红,二是固定细胞形态。
1.瑞氏染液
(1)瑞氏染料:0.1g
(2)甲醇(AR):60.0ml
瑞氏染料由酸性染料伊红和碱性染料亚甲蓝组成。将瑞氏染料放人清洁干燥研钵里,先加少量甲醇,充分研磨使染料溶解,将已溶解的染料倒人棕色试剂瓶中,未溶解的再加少量甲醇研磨,直至染料完全溶解,甲醉全部用完为止,即为瑞氏染液。配好后放室温,周后即可使用。新配染液效果较差,放置时间越长,染色效果越好。久置应密封,以免甲醉挥发或氧化成甲酸。染液中也可加中性甘油2-3ml,除可防止甲醇过早挥发外,也可使细胞着色清晰。
2. pH6.8磷酸盐缓冲液
磷酸二氢钾(KH2PO4):0.3g
磷酸氢二钠(Na2HPO4):0.2g
加少量蒸馏水溶解,再用蒸馏水加至100ml。
染色步骤
1.采血后推制厚薄适宜的血涂片。
2.用蜡笔在血膜两头画线,然后将血涂片平放在染色架上。
3.加瑞氏染液数滴,以覆盖整个血膜为宜,染色约1分钟。
4.滴加约等量的缓冲液与染液混合,室温下染色5~10分钟。
5.用流水冲去染液,待干燥后镜检。
注意事项
1. pH对细胞染色有影响。由于细胞各种成分均由蛋白质构成,蛋白质均为两性电解质,所带电荷随溶液pH而定。对某一蛋白质而言,如环境pH <pl(pl为该蛋白质的等电点),则该蛋白质带正电荷,即在酸性环境中正电荷增多,易与酸性伊红结合,染色偏红;相反,则易与亚甲蓝结合,染色偏蓝。因细胞着色对氢离子浓度十分敏感,为此,应使用清洁中性的载玻片,稀释染液必须用pH 6.8缓冲液,冲洗片子必须用中性水。
2.未干透的血膜不能染色,否则染色时血膜易脱落。
3.染色时间的长短与染液浓度、染色时温度及血细胞多少有关。染色时间与染液浓度、染色时温度成反比;染色时间与细胞数量成正比。
4.冲洗时不能先倒掉染液,应用流水冲去,以防染料沉淀在血膜上。
5.如血膜上有染料颗粒沉积,可用甲醇溶解,但需立即用水冲掉甲醇,以免脱色。
6.染色过淡,可以复染。复染时应先加缓冲液,创造良好的染色环境,而后加染液,或加染液与缓冲液的混合液,不可先加染液。
7.染色过深可用水冲洗或浸泡水中一定时间,也可用甲醇脱色。
8.染色偏酸或偏碱时,均应更换缓冲液再重染。
9.瑞氏染液的质量好坏除用血涂片实际染色效 果评价外,还可采用吸光度比值(raio of absoption, RA)评价。瑞氏染液的成熟指数以RA =1.3±0.1为宜。
参考文献:尚红, 王毓三, 申子瑜. 全国临床检验操作规程(第4版)[M]. 北京:人民卫生出版社.
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学习卡片 | 血涂片染色不佳的原因及纠正措施