GB 5009.210-2016 英文版(www.GB-GBT.cn): Determination of pantothenic acid in foods
GB 5009.210-2016: 食品安全国家标准 食品中泛酸的测定
中华人民共和国国家标准
1 范围
本标准规定了食品中泛酸和泛酸钙的测定方法。
本标准第一法适用于食品中泛酸的测定,第二法适用于营养素补充剂类保健食品和配方食品中泛酸(钙)的测定。
第一法 微生物法
5 菌种的制备与保存
5.1 菌种
5.2 储备菌种的制备
温箱中培养20h~24h,连续传种2次~3次。取出后放入2℃~4℃冰箱作为储备菌株保存。每月至
少传代一次,不宜超过25代。
试验前将储备菌株接种至琼脂培养基中,37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h以活化菌株,用于接种液的制备。
注:保存数周以上的储备菌株,不能立即用作接种液制备,试验前宜连续传种2代~3代以保证细菌活力。
5.3 接种液的制备
试验前一天,取2mL泛酸标准工作溶液和4mL泛酸测定用培养液混匀,分装于2支5mL离心
管中,塞好棉塞,于121℃高压灭菌15min后即为种子培养液。冷却后用接种环将活化的菌株转种至
2支种子培养液中,于37℃±1℃恒温培养箱中培养20h~24h。取出后3000r/min离心10min,弃
上清液,无菌操作下用已预先灭菌的生理盐水淋洗2次,3000r/min离心10min,弃上清液。再加入
3mL灭菌生理盐水,振荡混匀,制成接种液,立即使用。
6 分析步骤
注:所有操作均需避光进行
6.1 试样制备
谷薯类、豆类、乳粉等试样需粉碎、研磨、过筛(筛板孔径0.3mm~0.5mm);肉、蛋、坚果等用匀质
器制成食糜;果蔬、半固体食品等试样需匀浆混匀;液体试样用前振摇混合。4℃冰箱可保存1周。
6.2 试样提取
6.2.1 直接提取法
形态为颗粒、粉末、片剂、液体的营养素补充剂或强化剂、预混料,添加了泛酸钙的配方食品或保健
食品可采用直接提取法。
准确称取适量试样(m),固体试样0.2g~2g;液态试样5g~10g,精确至0.001g,转入100mL锥
形瓶中,加入80mL乙醇溶液,具塞,超声振摇提取4h以上至试样完全溶解,用水定容至100mL(V1)。
6.2.2 酶解法
一般谷薯类、肉蛋乳类、果蔬菌藻类、豆及坚果类等食品试样宜采用酶解提取法。
6.2.2.1 水解:准确称取适量试样(m,约含0.02mg~0.2mg泛酸),精确至0.001g。一般谷薯类、肉
类、蛋类、豆类及其制品称取1g~5g;新鲜果蔬、乳及其制品称取5g~10g。转入至100mL锥形瓶
中,加10mLTris缓冲液、40mL水,振荡混匀。于121℃高压条件下水解15min。冷却至室温,转移
至100mL容量瓶中,用水定容至刻度(V1),过滤。
6.2.2.2 酶解:准确吸取适量试样滤液(1.0mL~10.0mL,V2)至25mL具塞刻度试管底部,补水至
10mL,加5mLTris缓冲液。在冰浴条件下,依次小心加入预冷的0.1mL碳酸氢钠溶液、0.4mL碱性
磷酸酶溶液、0.2mL鸽子肝脏提取液和0.4mL水。小心混匀试管,避免混合物黏附于试管壁,加1滴
甲苯,37℃±1℃温箱中温育过夜(8h以上)。加水至20mL,用冰乙酸调节pH至4.5±0.1,加水定容
至25.0mL(V3),过滤。调节pH:吸取适量的试样酶解液(2.0mL~20.0mL,V4)于25mL具塞刻度试
管中,加水至20mL,用0.1mol/L氢氧化钠溶液调节pH至6.8±0.1,用水定容至25.0mL(V5)。
另取一试管加入5mLTris缓冲液和10mL水,同法加入碳酸氢钠溶液、碱性磷酸酶溶液、鸽子肝
脏提取液酶液及温育过夜,并调节pH至6.8±0.1,用水定容至25.0mL作为酶空白液。
注:以谷物、乳粉等为基质的配方食品如需计量基质本底泛酸含量,可采用酶解法提取。
6.3 稀释
根据试样中泛酸含量用水对试样提取液进行适当稀释(F),使稀释后试样提取液中泛酸浓度约为
20ng/mL。
6.4 测定系列管制备
所用试管使用前洗刷干净,用水煮沸30min,沥干后放入盐酸浸泡液中浸泡2h,经170℃烘3h后使用。
6.4.1 试样和酶空白系列管
取4支试管,分别加入1.0mL、2.0mL、3.0mL、4.0mL试样提取液(Vx),补水至5.0mL,加入
5.0mL泛酸测定用培养液,混匀。另取4支试管分别加入1.0mL、2.0mL、3.0mL、4.0mL酶空白液。
6.4.2 标准系列管
取试管分别加入泛酸标准工作溶液0.00mL、0.50mL、1.00mL、1.50mL、2.00mL、2.50mL、
3.00mL、3.50mL、4.00mL、4.50mL、5.00mL于试管中,补水至5.0mL,相当于标准系列管中泛酸含
量为0ng、10ng、20ng、30ng、40ng、50ng、60ng、70ng、80ng、90ng、100ng泛酸,再加入5.0mL泛
酸测定用培养液,混匀。为保证标准曲线的线性关系,应制备2套~3套标准系列管,绘制标准曲线时,
以每个标准点的均值计算。
6.5 灭菌将所有测定管塞好棉塞,于121℃高压灭菌15min。
6.6 接种和培养
待测定系列管冷却至室温后,在无菌操作条件下向每支测定管滴加接种液50μL。塞好棉塞,置于
37℃±1℃恒温培养箱中培养16h~20h,直至达到最大混浊度,即再培养2h后透光率(或吸光度值)
无明显变化。另准备一支标准0管(含0ng泛酸)不接种作为0对照管。
6.7 测定
将培养好的标准系列管、试样和酶空白系列管用漩涡混匀器混匀。用厚度为1cm 比色杯,于
550nm处,以未接种的0对照管调节透光率为100%(或吸光度值为0),依次测定标准系列管、试样和
酶空白系列管的透光率(或吸光度值)。如果0对照管有明显的细菌增长,或者与0对照管相比,标准0
管透光率在90%以下(或吸光度值在0.2以上);或标准系列管透光率最大变化量< 40%(或吸光度值变
化量< 0.4),说明可能有杂菌或不明来源的泛酸混入,需重做试验。
注:泛酸测定适宜的光谱范围540nm~660nm。
6.8 分析结果表述
6.8.1 标准曲线:以标准系列管泛酸含量为横坐标,每个标准点透光率(或吸光度值)均值为纵坐标,绘
制标准曲线。
6.8.2 试样结果计算:从标准曲线查得试样和酶空白系列管中泛酸的相应含量(ρx),如果每个试样的
4支试样系列管中有3支以上泛酸含量在10ng~80ng范围内,且按照式(1)计算每毫升试样稀释液中
泛酸浓度(ρ),各管之间相对偏差小于15%,则可继续按式(2)或式(3)~式(5)进行结果计算,否则需重新取样测定。
7 精密度
一般食品在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的15%;营养
素补充剂和强化食品在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的5%。
8 其他
一般食品称样量为5g时,检出限为0.03mg/100g,定量限为0.06mg/100g。营养强化剂类保健
食品和配方食品称样量为2g时,检出限为0.025mg/100g,定量限0.05mg/100g。第二法 高效液相色谱法
9 原理
利用泛酸易溶于水,在弱酸性至中性条件下(pH5.0~7.0)稳定的理化性质,试样用热水在超声波
振荡下提取,经C18反相色谱柱分离,在紫外检测器检测200nm波长处检测,根据色谱峰的保留时间及
紫外光谱图定性,外标法定量,计算试样中泛酸含量。
10 试剂和材料
除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。
10.1 试剂
10.1.1 盐酸(HCl)。
10.1.2 磷酸(H3PO4)。
10.1.3 磷酸二氢钾(KH2PO4):色谱纯。
10.1.4 七水合硫酸锌(ZnSO4·7H2O)。
10.1.5 乙腈(CH3CN):色谱纯。
10.1.6 淀粉酶:酶活力≥1.5U/mg。
10.2 试剂配制
10.2.1 盐酸(0.1mol/L):吸取8.3mL盐酸至1000mL容量瓶中,加水稀释定容至刻度,混匀。
10.2.2 硫酸锌溶液(0.5mol/L):称取14.4g七水合硫酸锌,加水溶解并定容至100mL。
10.2.3 磷酸二氢钾溶液(0.02mol/L):称取2.722g磷酸二氢钾,加500mL水溶解,用磷酸调节pH
至3.0,用水定容至1000mL,用0.45μm滤膜过滤。
10.3 泛酸标准溶液
注:D-泛酸钙(C18H32CaN2O10):纯度≥99%。
10.3.1 泛酸标准储备溶液(1.000mg/mL):准确称取泛酸钙1.087g,加水溶解并转入1000mL容量
瓶中,定容至刻度,混匀(4℃冰箱中可保存5d)。
10.3.2 泛酸标准中间溶液(100.0μg/mL):准确吸取标准储备溶液10.0mL于100mL容量瓶中,加水定容至刻度。临用前配制。
10.3.3 泛酸标准工作溶液:分别准确吸取泛酸标准中间液1.0mL,2.0mL,4.0mL,8.0mL,16.0mL,
32.0mL于100mL容量瓶中,加水定容至刻度,得到浓度分别为1.0μg/mL,2.0μg/mL,4.0μg/mL,
8.0μg/mL,16.0μg/mL,32.0μg/mL的泛酸标准工作溶液,临用前配制。
11 仪器和设备
11.1 天平:感量0.1mg。
11.2 恒箱培养箱:55℃±5℃。
11.3 超声波振荡器。
11.4 pH计:精度±0.01。
11.5 高效液相色谱仪:带紫外检测器或二极管阵列检测器。
12 分析步骤
12.1 试样制备固态试样粉碎并混合均匀;碳酸饮料需超声波去除二氧化碳,其他液态试样摇匀。
12.2 试样测定液的制备
12.2.1 营养素补充剂类保健食品
准确称取或量取适量试样(m),精确至0.001g,一般固体试样0.2g~2g,液态试样10g~20g,置
于50mL锥形瓶中,加入约30mL40℃~50℃温水超声提取20min,用水定容至刻度(V)。转入离心
管3000r/min离心5min~10min,取上清液过0.45μm滤膜,滤液待上机测定。
12.2.2 配方食品
准确称取适量试样(m),精确至0.001g,一般固态试样约5g,液态试样约20g。置于100mL锥形
瓶中,加入40℃~50℃温水至30mL。如果试样中含有淀粉,加入淀粉酶0.2g,振摇混匀,盖上瓶塞,
在55℃±5℃水浴条件下,振摇酶解120min~240min。如果试样不含淀粉,直接超声提取20min。
取出试样液,冷却至室温,用0.1mol/L盐酸调节pH 至5.0±0.1,加入5mL0.5mol/L硫酸锌溶
液,充分混合。转入50mL容量瓶中,用水定容至刻度并充分混匀后,转入离心管3000r/min离心
5min~10min,取上清液过0.45μm滤膜,滤液待上机测定。
12.3 稀释
必要时,试样测定液用水进行适当的稀释(F),使试样测定液中泛酸浓度在1μg/mL~32μg/mL范围内。
12.4 参考液相色谱条件
12.4.1 色谱柱:ODS-C18(粒径5μm,250mm×4.6mm)或具有同等性能的色谱柱。
12.4.2 柱温:28℃±0.5℃。
12.4.3 紫外检测器:检测波长:210nm。
12.4.4 流动相:0.02mol/L磷酸二氢钾溶液+乙腈=95+5。
12.4.5 流速:1.0mL/min。
12.4.6 进样量:10μL或20μL。
12.5 测定
12.5.1 标准曲线测定
按照已经确立的色谱条件,将泛酸标准工作液依次进行色谱分析(标准色谱图见附录B),记录标准
出峰时间、色谱峰高(或峰面积)。以标准工作液浓度为横坐标,峰高(或峰面积)为纵坐标,绘制标准曲线。
12.5.2 试样溶液的测定
取试样测定液按照色谱条件进行色谱分析,根据试样峰高(或峰面积)从标准曲线中查得相应的泛
酸浓度(ρ)。
计算结果以重复性条件下获得的两次独立测定结果的算术平均值表示,结果保留三位有效数字。
14 精密度
在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的5%。
15 其他
当称样量为5g时,检出限为0.025mg/100g,定量限为0.08mg/100g。
附 录 A泛酸测定用培养液的配制方法
A.1 试剂
A.1.1 盐酸(HCl)。
A.1.2 氢氧化钠(NaOH)。
A.1.3 活性炭:粒度为0.05mm ~0.074mm。
A.1.4 甲苯(C7H8)。
A.1.5 硫酸腺嘌呤(C10H10N10·H2SO4)。
A.1.6 盐酸鸟嘌呤(C5H5N5O5·HCl)
A.1.7 尿嘧啶(C4H4N2O2)。
A.1.8 L-胱氨酸(C6H12N2O4S2)。
A.1.9 L-色氨酸或DL-色氨酸(C11H12N2O2)。
A.1.10 核黄素(C17H20N4O6)。
A.1.11 盐酸硫胺素(C12H17ClN4OS·HCl)。
A.1.12 生物素(C10H16N2O3S)。
A.1.13 乙酸(C2H4O2)溶液:0.02mol/L。
A.1.14 对氨基苯甲酸(C7H7NO2)。
A.1.15 尼克酸(C6H5NO2)。
A.1.16 盐酸吡哆醇(C8H11NO3·HCl)。
A.1.17 无水乙醇(C2H5OH)。
A.1.18 乙醇溶液(1+3)。
A.1.19 聚山梨酯-80(吐温-80)。
A.1.20 无水葡萄糖(C6H12O6)。
A.1.21 三水合乙酸钠(C2H3O2Na·3H2O)。
A.1.22 无维生素酪蛋白(vitaminfreecasein)。
A.2.1 氢氧化钠溶液(10mol/L):称取40g氢氧化钠,用100mL水溶解。
A.2.2 氢氧化钠溶液(1mol/L):称取4g氢氧化钠,用100mL水溶解。
A.2.3 盐酸溶液(3mol/L):吸取250mL盐酸,用水稀释至1000mL,混匀。
A.2.4 盐酸溶液(1mol/L):按3.2.3配制。
A.2.5 酪蛋白液:称取50g无维生素酪蛋白于500mL烧杯中,加200mL盐酸溶液(3mol/L),于
121℃高压水解6h。将水解物转移至蒸发皿内,在沸水浴上蒸发至膏状。加200mL水使之溶解后再
蒸发至膏状,如此反复3次,以除去盐酸。用10mol/L氢氧化钠溶液调节pH至3.5±0.1。加20g活
性炭,振摇约20min,过滤。重复活性炭处理2次~4次,直至滤液呈淡黄色或无色。滤液加水稀释至
1000mL,加3mL甲苯,置2℃~4℃冰箱中可保存1年。
注:每次蒸发时不可蒸干或焦糊,以避免所含营养素破坏。可直接由试剂公司购买效力相当的酸水解无维生素酪蛋白。
A.2.6 腺嘌呤-鸟嘌呤-尿嘧啶溶液:分别称取硫酸腺嘌呤、盐酸鸟嘌呤和尿嘧啶各0.1g于250mL烧
杯中,加75mL水和2mL盐酸,加热使其完全溶解后冷却。若有沉淀产生,再加盐酸数滴,加热,如此
反复直至冷却后无沉淀产生为止。用水稀释至100mL,加3滴~5滴甲苯,贮存于棕色试剂瓶中,置2℃~4℃冰箱中可保存1年。
A.2.7 胱氨酸-色氨酸溶液:分别称取4gL-胱氨酸和1gL-色氨酸或2gDL-色氨酸于800mL水中,
加热至70℃~80℃,逐滴加入3mol/L盐酸溶液,不断搅拌,直至完全溶解为止。冷却至室温后加水
稀释至1000mL。加3滴~5滴甲苯,贮存于棕色试剂瓶中,于2℃~4℃冰箱中可保存1年。
A.2.8 维生素液Ⅰ:分别称取20mg核黄素和10mg盐酸硫胺素,加入1.0mL 生物素溶液
(40μg/mL),用0.02mol/L乙酸溶液溶解并定容至1000mL。加入3滴~5滴甲苯,贮存于棕色试剂
瓶中,2℃~4℃冰箱可保存1年。
A.2.9 维生素液Ⅱ:分别称取10mg对氨基苯甲酸、50mg尼克酸和40mg盐酸吡哆醇,溶于1000mL
乙醇溶液中。加入3滴~5滴甲苯,贮存于棕色试剂瓶中,2℃~4℃冰箱可保存1年。
A.2.10 聚山梨酯-80溶液:将25g聚山梨酯-80用乙醇溶解并稀释至250mL。2℃~4℃冰箱可保存1年。
A.2.11 泛酸测定用培养液:配制1000mL培养液,按表A.1吸取液体试剂,混合后加水300mL,依次
加入固体试剂,煮沸搅拌2min。用1mol/L氢氧化钠溶液、1mol/L盐酸溶液调节基础培养液pH至
6.8±0.1。加入乙盐溶液20mL,用水补至1000mL。配制时可根据培养液用量按比例增减。
