一、患者的准备

    根据所采标本的类型和所分析的物质而定。标本采集前患者的状态对检测结果有一定的影响，不同检测项目对标本采集前患者的状态有不同的要求。许多非疾病因素，如是否空腹、精神状况、体力活动、使用药物等都可能影响检验结果。因此，在标本采集前，要根据需要对患者做好相应的准备。

1.饮食

1.1 患者在采血前不宜改变饮食习惯，24h内不宜饮酒。

1.2 需要空腹采血的检测项目包括（不限于）：a）糖代谢：空腹血糖、空      腹胰岛素、空腹C肽等；b）血脂：总胆固醇、甘油三脂、高密度脂蛋       白胆固醇、低密度脂蛋白胆固 醇、载脂蛋白A1、载脂蛋白B、脂蛋白         a、载脂蛋白E、游离脂肪酸等；c）血液流变学（血粘度）；d）骨代         谢标志物：骨钙素、I型胶原羧基端肽β特殊序列、骨碱性硫酸酶等；         e）血小板聚集率（比浊法）。

2.运动和情绪

    采血前24h，患者不宜剧烈运动，采血当天患者宜避免情绪激动，采血前宜静息至少5min。若需运动后采血，则遵循医嘱，并告知检验人        员。

3.标本采集时间

3.1空腹血标本 

   空腹要求至少禁食8h，以12h～14h为宜，但不宜超过16h，宜安排在上午 7:00～9:00采血，空腹期间可少量饮水。空腹血液标本常用于临床生化定量测定， 受饮食、体力活动、生理活动等的影响较小，易于发现和观察病理情况，而且重 复性较好。

3.2 随时或急诊标本 指无时间限制或无法规定时间而必须采集的标本，被检者一般无法进行准备， 随时或急诊标本主要用于体内代谢比较稳定以及受体内因素干扰少的物质的检 查，或者急诊、抢救病人必须做的检查。3.3 指定时间标本 即指定采集时间的标本，根据不同的检测要求有不同的指定时间，如24h尿 蛋白定量、葡萄糖耐量试验、内分泌腺的兴奋或抑制试验、肾脏清除率试验等。

3.4 采血时间有特殊要求的检测项目包括（不限于） a）血培养：寒战或发热初起时，抗菌药物应用之前采集最佳，其他特殊要 求见血培养采集要求及注意事项；为8:00、16:00、24:00；采血前与患者核对生理周期；时间；b）促肾上腺皮质激素及皮质醇：生理分泌有昼夜节律性，常规采血时间点 c）女性性激素：生理周期的不同阶段有显著差异，采血日期需遵循医嘱， d）药物浓度监测：具体采血时间需遵循医嘱，采血前与患者核对末次给药 e）口服葡萄糖耐量试验：试验前3d正常饮食，试验日先空腹采血，随后将 75g无水葡萄糖（相当于82.5g含一水葡萄糖）溶于300ml温水中，在5min内喝完。在第一口服糖时计时，并于2h采血，其他时间点采血需遵循医嘱；f）其他功能试验：根据相关临床指南推荐的功能试验方案所设定的时间采 血；g）血液疟原虫检查：最佳采血时间为寒颤发作时。

3.5输液血标本的采集 宜在输液结束3h后采血；对于输注成份代谢缓慢且严重影响检测结果（如脂肪乳剂）的宜在下次输注前采血。紧急情况必须在输液时采血时，宜在输液的对侧肢体或同侧肢体输液点的远端采血，并告知检验人员。

4.已知的和需考虑的生物因素和干扰因素

4.1 生物因素 可引起所检测物质在体内的变化，此种变化与检测方法无关，分为可变的因 素和固定的生物因素：（1）可变的生物因素：包括营养、禁食、饮酒、体重、肌肉重量、体力活 动、姿势、气候、身高、作息规律、治疗药物；（2）固定的生物因素：包括性别、年龄、种族和遗传因素。

4.2 干扰因素 在收集和分析标本过程中，干扰因素常导致分析结果与被测物真实浓度不符。干扰因素主要包括：（1）溶血、脂血、胆红素血；（2）内源性物质如抗凝药物、治疗药物及其代谢产物、输注液体等；（3）外源性物质与标本混合在一起，如抗凝剂、残留的洗液、细菌、霉菌。

二、血标本采集

     血液检验标本分为全血、血浆、血清等。全血标本主要用于临床血液学检查， 例如血细胞形态学检查及分类和计数等；血浆标本适合血栓和止血检测；血清标 本多适合于临床化学和免疫学的检测。 按采集部位的不同分为静脉血、动脉血和末梢血三种。大多数检测项目采用静脉血，少数检测项目如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，末梢血主要用于各种微量法检测的项目或静脉采血不便的婴幼儿。标准真空采血管采用国际通用的管盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和 检测用途，可根据需要选择相应的采血试管。

2.1 静脉血标本采集 

2.1.1 静脉采血体位 

门诊患者采用坐位采血，病房患者采用卧位采血。体位对某些检测项目（如肾 素、血管紧张素、醛固酮等）的检测结果有明显影响，需遵循医嘱要求的体位进 行采血。

2.1.2静脉血采血部位的暴露 

  （1）坐位采血：要求患者侧身坐，上身与地面垂直，将手臂置于稳固的操作 台面上，肘关节置于垫巾上，使上臂与前臂呈直线，手掌略低于肘部，充分暴露采 血部位。 

  （2）卧位采血：要求患者仰卧，使上臂与前臂呈直线，手掌略低于肘部，充 分暴露采血部位。2.1.3 穿刺静脉的选择 脉采血。告知患者不宜穿着袖口紧的上衣，以减少采血后出血和血肿的发生。

2.1.3绑扎止血带 

止血带绑扎在采血部位上方5cm～7.5cm的位置，宜在开始采集第一管血时松 开止血带，使用时间不宜超过1min。如某些情况止血带需要在一个部位使用超过 1min，宜松开止血带，等待2min后再重新绑扎。如需绑扎止血带的部位皮肤有破 损，宜选择其他的采血部位。

2.1.4消毒 

  （1）普通静脉采血消毒：以穿刺点为圆心，以圆形方式自内向外进行消毒， 消毒范围直径5cm，消毒2次。消毒剂发挥作用需与皮肤保持接触至少30s，待自然 干燥后穿刺，可防止标本溶血及灼烧感。如静脉穿刺比较困难，在消毒后需要重新 触摸血管位置，宜在采血部位再次消毒后穿刺。

2.1.5 静脉穿刺与血液标本采集 拉皮肤固定静脉，避免触碰消毒区。

    (1)在穿刺部位下方握住患者手臂，拇指于穿刺点下方2.5cm～5.0cm处向下牵

   (2)保持针头斜面向上，使采血针与手臂呈30°左右的角度刺入静脉。成功穿 刺入静脉后，可在静脉内沿其走向继续推进一些，保持采血针在静脉内的稳定。 

2.1.6不同采血管的采集顺序：a）血培养瓶；b）柠檬酸钠抗凝采血管；c）血清采血管，包括含有促凝剂和/或分离胶；d）含有或不含分离胶的肝素抗凝采血管；e）含有或不含分离胶的EDTA抗凝采血管；f）葡萄糖酵解抑制采血管。

2.1.7 含添加剂标本采集后的处理：含有添加剂的采血管在血液采集后宜立即轻柔颠倒混匀，混匀次数宜按照产 品说明书的要求。不可剧烈震荡混匀，以避免溶血。

2.1.8血液标本无法正常采集时的处理 轻微调整进针位置。如采血针刺入静脉过深，可略微抽出。血针旋转半周。 如穿刺不够，可将采血针向静脉中略推入，不宜在不明静脉走向时盲目探查。 如穿刺已成功，采集中途血流突然停止，可能是血管壁贴附了针孔，可将采 如怀疑真空采血管真空度不足，应及时更换采血管。

2.1.9疑似动脉、神经损伤时的处理 在采血过程中，如穿刺部位快速形成血肿或采血管快速充盈，怀疑穿刺到动脉，立即终止采血并拔出采血针，按压采血部位5min～10min，直至出血停止。如需要，可在其他部位进行静脉穿刺。在采血过程中，如患者感到在穿刺部位近端或远端有放射性的电击样疼痛、 麻刺感或麻木感，怀疑穿刺到神经，立即终止采血并拔出采血针止血。如需要， 可在其他部位进行静脉穿刺。必要时可请临床医生对患者神经损伤程度进行评估及 处理。 

2.1.10患者晕厥的应急处理 如患者在采血过程中出现晕厥，宜立即停止采血，拔出采血针止血；将患者置 于平卧位，松开衣领；如疑似患者为空腹采血低血糖可予以口服糖水；观察患者意 识恢复情况及脉搏、呼吸、血压等生命体征，如生命体征不稳定宜立即呼叫急救 人员。有条件的单位可在采血点配置自动体外除颤仪，并培训工作人员使用。 

2.1.11预防标本溶血 预防标本溶血注意事项如下：

    a）消毒后穿刺部位自然干燥；

    b）不可穿过血肿部位采血；

    c）如使用注射器采血,宜确保针头牢固地安装在注射器上以防出现泡沫； 

    d）使用注射器时避免过度用力抽拉针栓；

    e）轻柔颠倒混匀含有添加剂的标本。

2.1.12拔针与穿刺点止血 

     先松开止血带，从采血针/持针器上拔出最后一支采血管，从静脉拔出采血针。拔出采血针后，在穿刺部位覆盖无菌棉签、棉球或纱布等，按压穿刺点5min（止血 功能异常的患者宜适当延长时间），直至出血停止。不宜曲肘按压，会增加额外的 压力，导致出血、淤血、疼痛等情况发生风险的增加。如在正确按压止血的前提下 出现血肿或出血持续时间超过5min，可请临床医生对患者凝血功能进行评估及处 理。对于已形成的血肿或淤青，24h内可给予冷敷止血，避免该侧肢体提拎重物， 24h后可热敷以促进淤血吸收。

2.2 动脉采血 

2.2.1 采集部位的选择  常见的穿刺部位是桡动脉、肱动脉、股动脉和足背动脉，首选桡动脉。在特 殊的情况下，如在24小时至48小时内出生的新生儿可选择头皮动脉或脐动脉。

2.2.2 标本采集的流程

   a）采血前患者应至少平卧或静坐5分钟，如患者给氧方式发生改变，应在采 血前等待至少20分钟至30分钟，以达到稳定状态； 

   b）通过改良的Allen试验评估尺动脉是否存在足够的侧支循环，如Allen试验 呈阳性，则可以从桡动脉采集动脉血； 

   c）选择采血位置：手臂外展使手掌朝上，腕关节下垫一个小软枕帮助腕部保 持过伸，找到靠近腕部皮肤皱褶处的动脉，将手指放在动脉上，触诊动脉的大小、 方向和深度。对于成年人，穿刺点一般在距腕横纹一横指（约1厘米至2厘米）、距手 臂外侧约0.5厘米至1厘米、桡动脉搏动最强之处；

  d）无菌准备穿刺部位，一只手以持笔姿势手持采集装置或注射器，另一只手 的一根手指放在动脉进针准确位置的上端，针尖斜面向上逆血流方向刺穿皮肤约5 毫米至10毫米，瞄准手指下方的动脉以与皮肤呈大约30°至45°的角度进针。当针进  入动脉时见血停针，血液会自动流进采血装置，至预设位置后拔针。必要时可轻柔地 缓慢拉动活塞，以便血液顺利流入注射器；

 e）采集到足够血量后，将无菌的纱布放在穿刺部位，快速取出采血装置，同 时在穿刺部位用力按压动脉至少3分钟至5分钟直至无出血为止。如果患者正在接 受抗凝治疗或凝血时间延长，应按压穿刺部位更长的时间。按压松开后立即检查穿 刺部位，如按压后未能止血或开始形成血肿，应重新按压直至完全止血；

  f）在按压动脉的同时，立即检查采血装置或注射器是否有气泡，小心地排出 余气，用密封组件封闭采血装置。通过颠倒或掌心搓动的方式进行混匀，以确保 标本充分抗凝。

2.2.3 标本采集的注意事项 动脉血标本采集应注意以下事项： 

  a）动脉采血过程中不宜过度抽吸，在采集和运输过程中应保证采血装置的气 密性；

    b）血气标本须立即运送到实验室，宜15分钟内送达，30分钟内完成检测。如 动脉血放置时间过长，可使气体分压、血糖、乳酸等检测项目结果出现误差；

  c）进行股动脉穿刺前应评估患者的凝血功能以及了解抗凝药物使用情况。下 肢静脉血栓患者，不应从股动脉或足背动脉采血；

 d）当无法进行常规动脉采血，只能从动脉留置导管采集血液时，采血前应弃 去最初抽取的3倍动脉导管死腔体积的血液，再进行动脉血标本的采集。

2.3 末梢血标本采集 

2.3.1 采集部位的选择 

皮肤穿刺采血（通常称为末梢血）常用于儿科患者少量血液标本的采集，还可用于滤纸收集、床旁检验等标本的采集。手指是成人和年龄较大儿童常用皮肤穿刺部位，穿刺点通常在中指或无名指 指腹的两侧。对于6至12个月大的婴儿（体重超过10公斤）及儿童，只要穿刺深度不超过1.5毫米，可以使用手指采血。对于新生儿和6个月以下婴儿（体重约3公斤 到10公斤），不应在手指采集毛细血管血液，宜进行足跟采血（穿刺深度在2毫米 以内）。 

2.3.2 末梢血采血管采集的顺序 

当在单次皮肤穿刺中获取多个标本时，建议按照以下采血顺序（包括玻璃和塑料的微量采血管）：

a）EDTA采血管；

b）其他添加剂采血管；

c）无添加剂采血管；

d）用于干血斑采集的滤纸（注意：新生儿筛查标本通常要求通过单独的穿刺采集）。 

2.3.3 末梢血标本采集的流程 

 a）采血前应评估患者身体状态、穿刺部位皮肤及血液供应状况。轻轻按摩采 血部位能促进局部组织血液循环，对于血液循环不佳的患者可进行适当热敷。对 于婴幼儿，应注意情绪的安抚和穿刺部位的固定；

b）消毒穿刺部位，从包装中取出采血针，从采血针上取下保护帽或防护罩（ 如果有）；

c）握住患者的足跟或手指，以防止突然移动。穿刺前应告知患者或婴儿的陪 同者即将穿刺；

 d）使用连贯的动作进行穿刺。注意：采血人员不得在同一部位进行连续重复 穿刺，采血针在使用后立即丢弃到锐器盒中；

 e）用无菌干燥的纱布、棉球或棉签擦去第一滴血。将采集装置与每个完全形 成的血滴接触，为了获得足够的样品可间歇性轻压，并在两次血滴形成之间释放压力以使血液重新充满毛细血管床，然后重新施加压力，重复上述操作直到标本量足够；

f）采集完成后盖上管帽，轻轻地将管内血液混匀，避免剧烈摇晃以防止溶血。在采集过程中应及时混匀抗凝标本以避免血液凝固；

g）使用无菌干燥的纱布、棉球或棉签按压采血部位，直至完全止血。

2.3.4 末梢血标本采集的注意事项

 a）不应通过过度或持续挤压手指或足跟的方式进行采血，避免以刮擦皮肤的 方式收集血滴，以防止溶血和/或组织液污染标本； 

b）当使用毛细管采集时，毛细作用会将血液自动吸入管中。毛细管宜保持略 微倾斜，以防止因空气进入而影响毛细作用。采集后垂直放置毛细管使血液能够 全部进入微量采血管中；

c）所有采血管应采集到所需的血液量。不得将两个未满采血管的血液混合在 一起，血量过多和不足会导致凝块形成和/或结果不准确；

d）在采集用于微量元素测定的标本时，实验室应遵循制造商建议或查阅文献 资料，对采血装置类型、材质、采集方式、储存条件等进行相应的规定，用于血 铅检测的毛细血管血标本应单独采集。

三、尿液标本采集 

3.1 尿标本分类： 

a）随机尿：随时采集的尿液，需要在采集容器上标注尿液采集时间。

b）第一次晨尿：清晨起床后，在未进早餐和做其他运动之前排出的尿液。c）第二次晨尿：第一次晨尿后的2～4小时内排出的标本。与第一次晨尿相比， 其成分可受之前饮食及运动的影响。

d）中段尿：在排尿过程中，弃去前、后时段排出的尿液而采集的中间时段尿 液。

e）计时尿：在特定时间段采集的尿液（与其他活动相关的特定时间段，如饭 后2h或前列腺按摩后）。

f）导管尿：医护人员采用无菌技术将导尿管从尿道插入膀胱后采集的尿液。

g）耻骨上膀胱穿刺尿：医护人员釆用无菌技术进行耻骨上穿刺，直接从膀胱 抽取的尿液。

3.2 标本采集容器及采集量要求 

采集容器应清洁、干燥、有盖、有较大开口、便于标记和转送、一次性使用；能 收集足够尿液，如收集定时尿，容器应足够大，并加盖，必要时加防腐剂；不可 菌容器收集。～3L。 使用未经洗涤的装药物或试剂的器皿收集标本；如需培养应在无菌条件下，用无 尿液采集容器的容积宜为10mL～50mL，采集24h尿液标本容器的容积宜为2L 

3.3 患者自行标本采集的指导（正确方法及相关注意事项） 

a）患者采集标本前要洗手，以及实施其他必要的清洁措施；

b）交给患者的尿液采集容器应贴有标签，并要求核对姓名；

c）告知患者需要采集的最少尿量；

d）采集标本时避免污染：如对于女性患者，避免月经期、性交后留取标本，且 留取标本前应对会阴部进行清洗，防止分泌物混入尿液标本；

e）采集标本后，需加盖将容器盖好，防止尿液外溢；

f）采集计时尿液标本时，应告知患者该时段的起始和截止时间；采集前应将 尿液排空，然后采集该时段内（含截止时间点）排出的所有尿液；

g）如防腐剂有生物危害性，应建议患者先将尿液采集于未加防腐剂的干净容 器内，然后小心地将尿液倒入含有防腐剂的采集容器中；

h）对尿液标本进行多项检测时，加入不同种类的防腐剂可能有干扰。当多种 防腐剂对尿液检测结果有干扰时，应针对不同检测项目分别采集尿液标本（可分 次采集，也可一次采集分装至不同容器中）；

i）特定时段内采集到的尿液应保存于2℃~8℃条件下。

j）采集计时尿时，采集的尿量超过单个容器的容量时，需用两个容器；第二个容器采集的尿量一般较少，加入防腐剂的量也相应减少。

3.4 儿童尿液标本的采集 

能自行留尿的儿童可按成人的方法采集尿液标本；自行留尿有困难的儿童， 由医护人员按如下步骤操作：

a）分开儿童双腿；会阴部皮肤上；

b）保持耻骨会阴部清洁、干燥，无黏液、粉末、油和护肤品等物质的污染；

c）宜釆用儿科尿液采集袋，或使用洁净塑料袋固定采集尿液；

d）对于女性儿童，拉紧会阴部皮肤，将胶条紧压于外生殖器四周的皮肤上， 避免来自肛门区域的污染；对于男性儿童，将采集袋套于阴茎上，将胶条压紧于

e）确保胶条牢固地粘于皮肤，胶条的粘贴应无皱折；

f）定时（如每隔15min）察看采集容器；

g）从患者处取回采集的标本，注明标识；

h）将标本从采集袋倒入采集容器，在容器上贴标签，然后送往实验室检查；

i）婴幼儿采集尿液标本时，若使用了脱脂棉球，尿沉渣显微镜检查时应注意 外源性污染的存在。

四、粪便标本采集 

1）采集容器：应使用一次性、有盖、可密封、洁净、干燥、不渗漏、不易破 损、开口和容量适宜的容器；用于细菌培养检查的标本应使用无菌容器。

2）应尽可能选取附着黏液、脓液、血液的新鲜异常粪便（宜多个部位留取， 蚕豆大小），并避免尿液和异物（如卫生纸、花露水、强力清洁剂、除臭剂等） 污染。采集后的标本宜在1h内（夏季）或2h内（冬季）送检。3）粪便隐血试验应嘱患者于检查前3d内禁食肉类、含动物血的食物、某些蔬 菜，禁服铁剂和维生素C等对实验有干扰作用的药物。宜连续3天，每天送检标本 （适用时），每次采集粪便2个部位的标本送检（置于同一标本容器中），不可使 用直肠指检标本。 应收集24h粪便。 

4）进行细菌检查的标本应在发病初期和使用抗菌药物前采集，腹泻患者标本 应在急性期（3天内）采集。进行厌氧菌培养的标本应尽快送检，必要时在床旁接种。

5）查原虫滋养体的标本应留取含脓血的稀软粪便，排便后立即检查，冬季需要采取保温措施送检；查蛲虫卵时，在子夜或早晨排便前用肛拭子在肛周皱襞处采 集标本；查血吸虫毛蚴时，应至少采集30g新鲜粪便；查寄生虫虫体及虫卵计数时应收集24h粪便。

五、前列腺和精液采集

采集4mL～5mL，使用肝素锂、草酸盐或EDTA粉末抗凝，可能影响结晶检查结果；第3管应使用肝素（25U/mL）抗凝、也可以采用多聚茴香脑磺酸钠（SPS）抗凝剂 前列腺液标本应由临床医师进行前列腺按摩术采集，可直接滴在玻片上；若按摩不出前列腺液，可检查按摩后的尿液。疑为前列腺结核、脓肿或肿瘤的患者 禁忌前列腺按摩。一次按摩失败或检查结果阴性，而明确有临床指征者，可隔3~5 天后重新复查。

精液采集最好在实验室附近，室温应控制在20～35℃,采集标本前禁欲3~7天， 采集精液前排净尿液。可用手淫法或其它方法，将一次射出的全部精液直接排入 洁净、干燥的容器内。因精子生成日间变动较大，不能仅凭一次检查结果做诊断。一般应间隔1～2周检查一次，连续检查2～3次。

男性分泌物标本：先清洁尿道口，将棉拭子伸入男性尿道1cm，旋转3～5次获 得标本，将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖；

六、阴道分泌物检验标本采集要求 

标本采集宜使用1个或多个灭菌拭子（头部包有聚酯棉球）或灭菌圈（棉球对淋病奈瑟菌有影响，木质器材对沙眼衣原体有影响）。应根据检查目的采集不同 部位的标本。

a）分泌物标本采样应在非月经期进行；采样前3天内不使用阴道内药物，不 冲洗阴道；24小时内不应有性行为；

b）宫颈标本采集，采集时先用棉签将宫颈口或尿道口过多的分泌物轻轻擦去， 更换棉拭子，将棉拭子伸入宫颈，通过上皮交界处，旋转3～5周，以保证取得较多 的柱状上皮标本，对于怀疑HPV感染的患者，尽量采集病变部位标本，可提高 HPV的检出率。将取样后的棉拭子放入配套的软管中，旋紧管盖；

七、痰标本采集注意事项 

a）向患者说明痰和唾液的区别；

b）带假牙的患者摘掉假牙；

c）请患者用清水漱口；

d）指导患者用力咳出深部痰，勿将唾液和鼻后分泌物当作送检；

e）立即盖好盖子并拧紧，送检；

f）最好选择晨起漱口后，咳出的深部痰送检。

g）当咳嗽无痰或少痰时，可采集诱导痰：（用超声雾化器，患者吸入3%NaCl 约3mL～5mL；有气道高反应者慎用高渗NaCl诱导）。

h）用无菌螺帽宽口容器收集诱导痰标本。

i）真菌和分枝杆菌诊断宜连续采集多份痰标本；

j）痰标本不能进行厌氧培养；

八、鼻咽拭子采集注意事项 

a）请患者头部保持不动，去除鼻前孔中表面的分泌物；

b）通过鼻腔轻、缓插入拭子至咽部；

c）当遇到阻力后即达鼻咽，停留数秒吸取分泌物；

d）轻旋转取出拭子，置于转运培养基中；

e）用于病毒学检验的拭子，将头浸入运送液尾部弃去旋紧管盖；

f）用于细菌学检验的拭子，插回采样装置或适宜转运中。

g）不推荐鼻咽拭子做普通细菌培养，特殊细菌除外，如百日咳鲍特菌、脑膜 炎奈瑟菌。

h）若怀疑百日咳鲍特菌感染，需提前通知实验室，准备特殊的转运培养基（ Regan-Lowe）。条件许可时可提供接种培养基，直接床旁接种后转运至实验室。

i）鼻咽拭子不能用于检验鼻窦炎的病原菌。

九、 口咽拭子 

a）请患者坐下，头后倾，张大嘴，去除鼻前孔中表面的分泌物；

b）采样者用压舌板固定舌头，用涤纶或藻酸钙拭子越过舌根到咽后壁及扁桃 体隐窝、侧壁等处；

c）反复擦拭3～5次，收集粘膜细胞；

d）轻取出拭子，避免触及舌头、悬垂体口腔粘膜和唾液；

e）拭子插回采样装置中或适宜的转运。

f）对化脓性咽炎，口咽拭子细菌培养主要用于筛查A群β-溶血链球菌和溶血隐 秘杆菌；

g）当检验口咽拭子中的淋病奈瑟菌时，临床需提前告知实验室；

i）对于儿科患者，宜常规报告流感嗜血杆菌；鼻咽吸取物联合检验以提高呼吸道感染的病原检出率。 12.11 子宫颈内或宫颈标本 a）用温盐水湿润阴道窥器；

j）一般情况下，不单独选用咽拭子标本诊断上呼吸道感染，宜与鼻咽拭子或鼻咽吸取物联合检验以提高呼吸道感染的病原检出率。

十、子宫颈内或宫颈标本

a）用温盐水湿润阴道窥器；

b）使用阴道窥器轻轻按压子宫，打开窥器，使用藻酸钙、涤纶或没有毒性的 棉拭子采集分泌物。或者打开窥器，将拭子插入宫颈管1cm～2cm，转2~3圈采集分 泌物，必要时停留20s～30s并转动取样；

c）怀疑淋病奈瑟菌时，可以同时采集直肠拭子与子宫颈标本。

十一、 男性泌尿生殖道标本 

a）从尿道挤压分泌物，一根拭子采集分泌物用于培养，另一根拭子采集分泌 物用于涂片，将拭子在玻片表面滚动2cm～3cm。

b）若无分泌物，可将泌尿生殖道拭子插入尿道约2cm，轻轻旋转取出。c）尿道分泌物革兰染色查到白细胞内革兰阴性双球菌可作为男性淋病患者的 诊断依据。

十二、参考标准 

1、《静脉血液标本采集指南》，中华人民共和国卫生行业标准WS/T611-2020

2、《临床体液检验技术要求》，中华人民共和国卫生行业标准WS/T662-2020

3、《尿液标本的采集与处理》，中华人民共和国卫生行业标准WS/T348-2024

4、《临床微生物实验室血培养操作规范》，中华人民共和国卫生行业标准 WS/T503-2017

5、《临床微生物学检验标本的采集和转运》，中华人民共和国卫生行业标 准WS/T640-2018