3.2.1 放射性过敏原吸附试验(RAST)
RAST是最早使用的过敏原检测方法,该方法敏感性、特异性和重复性均很高,易于自动化,在国外得到广泛应用。但因为该试验需要放射性同位素,价格昂贵,半衰期短,且易污染环境,2010年美国国家过敏及传染性疾病研究所(NIAID)/国立卫生研究院(NIH)建议停止采用RAST诊断过敏,用更敏感的免疫方法代替。
3.2.2 酶免法(EIA)
EIA的特异性和敏感性与RAST相似,它除了有RAST的优点外,而且还相对价廉,无放射性污染,安全等特点。原理是过敏原吸附在微孔板或纸片上,当加入含有特异性IgE抗体的待测血清时,抗体便与相应的过敏原结合,再加入酶标记的抗人IgE抗体和相应底物,就可以显色测定血清特异性IgE的含量。通常用于过敏原特异性IgE的检测有间接法和捕获法,绝大多数过敏原体外检测系统采用间接法。
3.2.3 金标免疫技术
金标免疫技术是以胶体金为标记物,应用于抗原抗体反应的一种新型免疫标记技术。其优点是快速、简便、经济实用,稳定性好,其缺点是灵敏度不如酶标技术,一般作为定性,不易定量。临床上采用的是斑点金免疫层析试验,如ImmunoCAP Rapid,但由于是定性结果,临床应用受到一定的限制。
3.2.4 免疫印迹法(IBT)
IBT是在普通EIA基础上发展起来的新型技术,其特点是较ELISA特异性更高,目前主要见于德国敏筛过敏原等检测系统。其原理是将过敏原通过机器划线,非共价吸附于硝酸纤维膜上,更好地保留了过敏原蛋白的空间构象,其特点是可靠性高,特异性好。并融合了生物素亲和素放大系统,大大提高了反应的敏感度,可以进行微量的抗体检测,结果准确可靠。研究显示,其敏感度与皮试相近,并与CAP系统单项过敏原检测试验结果相符。
FIA具有专一性强、灵敏度高、标记物不易失活、无放射性污染等优点。但一般荧光测定存在本底较高等问题,在一般荧光免疫测定技术上发展了一些新型检测技术,其中一种就是引入酶标记技术,如Phadia的CAP系统采用的就是荧光酶免技术,该系统是目前国际上获得较为广泛应用的过敏原体外定量检测系统。其主要原理是过敏原包被在经溴化氢活化的帽状纤维素衍生物载体上,后者与过敏原有极高的结合能力,标记β-半乳糖苷酶的抗人IgE抗体作用于4-甲基伞酮-β-D半乳糖苷产生4-甲基伞酮发出荧光。CAP系统主要是定量检测过敏原提取物或过敏原组分,但近年有文献报道,由于其固相载体含碳水化合物抗原决定簇CCD结构,高达25%的患者可能出现假阳性情况。
3.2.6 化学发光免疫分析(CLIA)
CLIA是将发光系统与免疫反应相结合,具有免疫反应的特异性,更具有发光反应的高敏感性,是继放免分析、酶免分析、 荧光免疫分析之后发展起来的新型免疫测定技术。目前采用该技术的有日立的MAST和西门子的IMMULITE 2000系统,不同于CAP系统,MAST系统是组合检测,一次同时半定量检测36种过敏原;IMMULITE 2000系统和CAP系统类似,可检测500多种过敏原,且可用于其它各种免疫分析检测,是一种通用化学发光免疫分析系统。新近美国Hycor推出的NOVEOS系统采用荧光磁微粒化学发光免疫法,一个测试只需要4μL血清,且不受CCD的干扰。
3.2.7 过敏原微阵列芯片法(Allergen-MicroArrays)
微阵列芯片技术基础研究始于20世纪80年代末,从生物遗传学领域发展而起。微阵列技术是利用分子杂交的原理,用自动化仪器把不同的,数以百计、千计已知部分序列的DNA探针或蛋白质“印”在玻片或尼龙膜上而成阵列。主要是DNA芯片和蛋白质芯片。Wiltshiere等人第一次把该方法用于过敏原sIgE检测。该方法较以往常规的检测技术,具有大通量、标本用量少、平行性检测等优点,使得同时检测上百种过敏原蛋白成为可能,被视为是最有前景的诊断工具之一,尤其适用于小儿过敏的诊断。目前国际上已有若干家过敏原检测产品采用该方法,但广为接受的就是瑞典Phadia的ImmunoCAP ISAC。基于生物芯片的优点,目前也有很多厂家或组织尝试研发不同类型的生物芯片技术用于sIgE检测,如Feyzkhanova等人研发的水凝胶生物芯片60ul血清可以测定21种过敏原sIgE和总IgE,测定结果与德国Fooke的酶免试剂盒测定结果具有很好的相关性;Christian Lupinek等人介绍了欧洲研究项目—MeDALL过敏原芯片,这是相较上述ImmunoCAP ISAC更先进成熟的技术平台,可以检测将近170种过敏原分子的IgE,具有很好的敏感度和特异性,适用于过敏研究、过敏的精确诊断、疾病的监测、以及疗效的监测等。目前具有最大检测通量的也是最新的微阵列芯片检测是奥地利的FABER测试,可检测将近300种过敏原提取物或分子的特异性IgE。但是,由于很多过敏原蛋白及过敏原组分尚未经过临床评价,微阵列芯片法目前还不适用于过敏性疾病的常规诊断。
不过,目前过敏原特异性IgE的检测尚无任何的国际标准,由于各个厂家使用的过敏原原料的来源,过敏原结合到载体的方法和检测方法均不同,所以不同的厂家对同一样本的过敏原特异性IgE检测的结果可能会存在差异,尤其是定量的结果之间往往缺乏较好的可比性,Libeer JC 等人在对比ImmunoCAP、Immulite 和Adcia Centaur三个系统发现,虽然三个产品都是过敏原定量检测系统,但值差异还是很大,花生sIgE的ImmunoCAP值明显高于另外两个产品的值;Park KH等人在比较ImmunoCAP和Immulite的时候发现,虾的sIgE值的相关系数只有0.643,不同的过敏原相关性差异很大。因此过敏原的标准化亟待解决。
近几年基因组学和蛋白质组学等分子生物学技术的发展从根本上改变了体外诊断技术的水平,并使变态反应学的基础研究和过敏性疾病的临床诊疗获得了长足的进步。用于检测特异性IgE抗体的基因重组过敏原组分蛋白的成功合成使得过敏原组分诊断(Component-Resolved Diagnosis ,CRD)成为可能。最近,CRD已经用于榛子和花生过敏研究,并与DBPCFC结果进行比较,E. Eller&C. Bindslev-Jensen的最近研究显示,其主要过敏原Ara h2蛋白的诊断效能显著优于花生粗提取物,抗Ara h 2特异性IgE>1.63kU/L作为临床相关花生过敏的Cutoff值同时具有较好的敏感度和特异性;但是Beyer等人研究认为抗Ara h 2特异性IgE在14.4kU/L具有90%的花生激发试验阳性预测值,抗Cor a 14特异性IgE在47.8kU/L具有90%的榛子激发试验阳性预测值。CRD进一步结合生物芯片技术可为过敏性疾病患者提供更精准快速的sIgE检测结果。
目前已经有很多常规的检测方法采用过敏原组分蛋白,如在欧洲一些国家,已经有采用天然组分过敏原蛋白用于临床常规SPT检测,如纯化的天然桃子蛋白Pru p 3以及纯化的天然枣子profilin;Andersson K等人在榛子提取物中掺入Cor a 1.04,大大提高了体外sIgE检出率,且研究发现,与DBPCFC相比,可以大大提高阴性预测值。而且也越来越多的常规检测方法开始采用基因重组过敏原组分蛋白代替传统天然纯化过敏原蛋白,Kollmann等人在最近的研究中采用纯化重组Mal d 1和Bet v1及桦树花粉提取物用于皮肤点刺试验,在本研究中,21位患者就有20位患者对50ug/ml浓度的rMal d 1反应阳性,皮肤点刺试验阳性率为95%;在对奥地利花生过敏患者的研究发现,有症状的患者主要是对Ara h 2和Ara h 6过敏,如果同时伴随有桦木花粉过敏,在Ara h 2特异性IgE阴性的情况下,应该检测Ara h 8;另外研究发现,儿童花生过敏通常是对Ara h 1、2和3过敏,且Ara h 2特异性IgE≥1.0kUA/L与发生花生引起的系统反应显著相关。
重组过敏原组分蛋白的使用,将使过敏原标准化正逐渐成为可能。